INTRODUCTION
DEVELOPPEMENT NORMAL D'"AMPHISBETIA OPERCULATA"
ETUDE EXPERIMENTALE DU DEVELOPPEMENT D'"AMPHISBETIA OPERCULATA"
POLARITE DES EMBRYONS D'"HYDRACTINIA ECHINATA" ET DE "DYNAMENA PUMILA"
DEVELOPPEMENT DES FRAGMENTS DE PLANULAS DE "DYNAMENA PUMILA"
POLARITE PHYSIOLOGIQUE ET POLARITE MORPHOLOGIQUE
RESUME ET CONCLUSION
INDEX BIBLIOGRAPHIQUE
Fig. 1. - Oeufs de l'Argulus catostomi Dana et Herrick
Fig. 2. - Organe frontal du Dendrocephalus cervicornis Weltner
Fig. 3. - Branchinecta paludosa MĂĽller femelle
Fig. 4. - Branchinecta paludosa Müller mâle
Fig. 5. - Accouplement chez le Cyzicus (Estheria) cycladoides (Joly)
Fig. 6. - Femelle de Xiphocephalus Whitei Spence Bate, vue de profil, avec ses oeufs disposés régulièrement sur une rangée dans le quatrième segment thoracique
Fig. 7. - Deux segments de la femelle avec les jeunes disposés régulièrement côte à côte
Fig. 8. - Jeune de la même espèce, au moment de l'éclosion
Fig. 9. - Nebalia, avec ses oeufs fixés à la face ventrale
Fig. 10. - Nyctiphanes Couchii (Bell), avec sa ponte
Fig. 11. - Squilla mantis Latreille, avec sa ponte, vue latéralement
Fig. 12. - Squilla mantis Latreille, avec sa ponte, vue ventralement
Fig. 13. - Petasma de Squilla Desmaresti Risso
Fig. 14. - Appareil copulateur de l'Ecrevisse fluviatile
Fig. 15. - Accouplement chez le Cambarus affinis Say
Fig. 16. - Petasma d'un Penaeidé (Parapaeneopsis)
Fig. 17. - Appareil copulateur du Callinectes sapidus Rathbun
Fig. 18. - Groupe d'oeufs de l'Ecrevisse fluviatile fixés aux soies des appendices abdominaux
Fig. 19. - Jeune Ecrevisse fluviatile au moment de l'éclosion
Fig. 20. - Diaptomus gracilis G.-O. Sars, antenne
Fig. 21. - Diaptomus gracilis G.-O. Sars, premier acte de l'accouplement
Fig. 22. - Diaptomus gracilis G.-O. Sars, fixation du spermatophore
Fig. 23. - Cyclops fuscus Jurine, en copulation
Fig. 24. - Canthocamptus crassus G.-O. Sars, en copulation
Fig. 25. - Cyclops fuscus Jurine, avec ses deux paquets d'oeufs
Fig. 26. - Phryxocephalus cincinnatus Ch.-B. Wilson, avec ses deux paquets d'oeufs
Fig. 27. - Flabellicola neapolitana Ch. Gravier, parasite d'une Annélide Polychète
Fig. 28. - Oeuf durable du Diaptomus caeruleus Fischer, avec sa double enveloppe
Fig. 29. - Coupe de l'oeuf durable du Diaptomus denticornis Wierjewski, au stade de repos
Fig. 30. - Patte thoracique (dernière paire) du mâle de Trichoniscus roseus Koch
Fig. 31. - Appareil génital de Trichoniscus
Fig. 32. - Appendice du coxopodite du maxillipède, chez la femelle porteuse d'oeufs de l'Asellus aquaticus L.
Fig. 33. - Sacs incubateurs du Sphaeroma rugicauda Leach
Fig. 34. - Coupe transversale d'une femelle du Philoscia muscorum Scopoli au niveau du quatrième segment thoracique
Fig. 35. - Coupe transversale d'une femelle du Cammarus locusta L., au niveau du quatrième segment thoracique
Fig. 36. - Erichthonius abditus Templet, deuxième paire de pattes
Fig. 37. - Accouplement chez le Gammarus locusta L.
Fig. 38. - Gammarus pungens H. M. Edwards femelle; patte thoracique de la cinquième paire, début de la ponte
Fig. 39. - Gammarus Dübeni Lilljeborg, sacs ovigères et région postérieure de l'ovaire gauche
Fig. 40. - Anchialina typica Kröyer, femelle avec sa ponte
Fig. 41. - Neomysis vulgaris Thompson; annexe de l'avant-dernière lamelle incubatrice
Fig. 42. - Accouplement chez le Lamprops fasciata G.-O. Sars
Fig. 43. - Seconde patte thoracique du mâle en parure de noces du Brachydiastylis resima Kröyer
Fig. 44. - Diastylis lucifera Kröyer femelle, avec sa ponte
Fig. 45. - Diastylis rathkei Kröyer femelle, second maxillipède à la période d'incubation
Fig. 46. - Buprorus Loveni Thorell, femelle ovigère vue latéralement et dorsalement
Fig. 46 bis. - Poche ovigère du Triops cancriformis Schäffer
Fig. 47. - Anatomie du Lepas
Fig. 48. - Mâle nain d'Alcippe
Fig. 49. - Schéma de l'appareil génital mâle d'un Cypriné d'eau douce
Fig. 50. - Organe de Zenker (ductus ejaculatorius) du Candora dentata G. W. MĂĽller, en coupe longitudinale optique, avec sa charpente chitineuse
Fig. 51. - Première patte thoracique du mâle du Cyprideis littoralis Brady
Fig. 52. - Femelle gravide du Conchaecia magna Claus
Fig. 53. - Accouplement chez le Peracantha truncata O. F. MĂĽller
Fig. 54. - Accouplement chez le Daphnia magna Straus
Fig. 55. - Oeuf durable du Daphnia pulex de Geer
Fig. 56. - Femelle du Podon Leuckarti G.-O. Sars
Fig. 57. - Ephippium de l'Alona rectangularis G.-O. Sars
Fig. 58. - Ephippium de l'Eurycercus lamellatus O. F. MĂĽller
Fig. 59. - Ephippium du Leydigia acanthocercoides Fischer
Fig. 60. - Ephippium du Bosmina longirostris O. F. MĂĽller
Fig. 61. - Coupe transversale de l'ephippium du Daphnia magna Straus
Fig. 62. - Ephippium du Daphnia magna Straus et du Daphnia pulex de Geer
Fig. 63. - Coupe médiane optique du Daphnia pulex de Geer montrant l'organisation générale et la place de la cavité incubatrice chez la femelle non gravide
Fig. 64. - Cavité incubatrice et ephippium de l'Eurycercus lamellatus O. F. Müller
Fig. 65. - Cavité incubatrice remplie d'embryons et pourvue du corps nourricier chez les genres Bythotrephes et Polyphemus
Fig. 66. - Oeuf durable du Daphnia pulex de Geer et embryon de la même espèce au moment où il s'échappe de l'ephippium
Introduction
I. - Crustacés pondant directement leurs oeufs dans le milieu extérieur
A. Copépodes
B. Ostracodes
C. Euphausiacés
D. Anaspidacés
E. Branchiopodes
II. - Crustacés dont les oeufs restent attachés à la mère, soit à la face ventrale du thorax, soit aux appendices abdominaux, soit sur les côtés du corps
A. Oxycéphalidés (Amphipodes)
B. Leptostracés (Nebalia)
C. Euphausiacés
D. Stomatopodes
E. Décapodes
F. Copépodes
III. - Crustacés chez lesquels les oeufs se développent dans une poche incubatrice
A. Isopodes
B. Amphipodes
C. Mysidacés
D. Cumacés
E. Copépodes ascidicoles
V. - Crustacés dont les oeufs se développent dans l'organisme maternel
A. Cirripèdes
B. Ostracodes
C. Cladocères
Conclusion
Explication des figures
Index bibliographique
Etude expérimentale du développement de quelques Hydraires, par GEORGES TEISSIER
Sur quelques Oligochètes de la région arctique et des îles Faeroer, par L. CERNOSVITOV
Les glandes venimeuses des Aranéides, par J. MILLOT
Action à distance de facteurs biologiques et chimiques sur le développement de l'oeuf d'Oursin, par M. J. MAGROU et Mme M. MAGROU
Biologie des Méloés, par le Dr AUGUSTE CROS
Contribution à l'étude de la faune du Mozambique (Voyage de M. P. LESNE, 1928-1929). - 4e Note: Copéognathes, par A. BADONNEL
Bibliographie. - VANDEL (A.). La parthénogenèse
Observations sur les moeurs de quelques Orthoptères cavernicoles, par P. REMY
Sur les larves de quelques Fourmis promenées pendant la nuit par des Formica fusca et des Formica pratensis dans six boîtes à observation, par MARGUERITE COMBES
The Biology of a Tropical Stream in a frigid country, by Dr. H. P. KJERSCHOW AGERSBORG and Mr. WILLIAM J. DOWNER
La ponte et l'incubation chez les Crustacés, par CHARLES GRAVIER
Action à distance de facteurs biologiques et chimiques sur le développement de l'oeuf d'Oursin, par M. J. MAGROU et Mme M. MAGROU
Biologie des Méloés, par le Dr AUGUSTE CROS
Contribution à l'étude de la faune du Mozambique (Voyage de M. P. LESNE, 1928-1929). - 4e Note: Copéognathes, par A. BADONNEL
Bibliographie. - VANDEL (A.). La Parthénogenèse
Observations sur les moeurs de quelques Orthoptères cavernicoles, par P. REMY
Sur les larves de quelques Fourmis promenées pendant la nuit par des Formica fusca et des Formica pratensis dans six boîtes à observation, par MARGUERITE COMBES
The Biology of a Tropical Stream in a frigid country, by Dr H. P. KJERSCHOW AGERSBORG and Mr. WILLIAM J. DOWNER
La ponte et l'incubation chez les Crustacés, par CHARLES GRAVIER