FIG. 1. - Souche à sarments court-noués (réduction 1/2)

FIG. 2 et 3. - Sarments court-noués: A, sarment normal, de B à G, sarments court-noués, D, E, F, court-noués et ramifiés (grandeur nature).

FIG. 4. - Rameau à feuilles persillées, B atteintes d'Esca. En A, feuille déformée (grandeur nature)

FIG. 5. - Feuille fortement lasciniée, de vigne atteinte à la fois d'Esca et de Court-noué (grandeur nature)

FIG. 6. - Feuille atteinte de résorption, suite de l'Esca ou de Court-noué (grandeur nature)

FIG. 7. - Rameau à feuilles persillées, obtenues artificiellement par inoculation de l'Esca (grandeur nature)

FIG. 8. - Souche atteinte du Court-noué parasitaire, avec écorce fissurée sur certains rameaux et mycélium dans ces fissures (réduction: d'1/3)

FIG. 9. - Jeune pousse de vigne court-nouée (réduction d'1/4)

FIG. 10 et 11. - Tige court-nouée, en fig. 10, fendue et vue au centre, en fig. 11, B, côté exactement opposé, vue en surface de la tige, m, moelle fortement noircie et entourée de la zone a, caractéristique, p, plaie de taille (grandeur nature). Premier échantillon qui nous a mis sur la trace du parasite

FIG. 12. - Tige saine, fendue en son centre, représentée comparativement aux tiges altérées (réduction d'1/3)

FIG. 13. - Tige malade, fendue en son centre, montrant l'altération de la moelle et celle du bois au niveau du point de soudure de la greffe et des plaies de taille extérieures (réduction d'1/3)

FIG. 14 et 15. - Vigne âgée, à gros tronc (Olonzac, Hérault), fendue en son centre, très caractéristique, aussi bien en fig. 14 qu'en fig. 15, des lésions de la maladie (réduction d'1/3). Communication de la moelle altérée avec des plaies de taille

FIG. 16. - Jeune plant de pépinière; la grosse moelle du premier mérithalle sous la soudure noircie à la suite de l'envahissement du parasite par le point de soudure; le dernier mérithalle moins noirci, mais envahi et à talon ouvert; mérithalle central intact, comme les diaphragmes (grandeur nature)

FIG. 17. - Rameau à grosse moelle envahie, mais moins noircie que le premier mérithalle de la fig. 16. On voit les deux diaphragmes inférieurs percés en noir par le mycélium (grandeur nature)

FIG. 18. - Jeune souche avec moelle a, noircie, et deux plaies de taille envahies (grandeur nature)

FIG. 19. - Autre souche altérée sur le point de soudure de la greffe (grandeur nature)

FIG. 20. - La moelle a dans cette tige fendue, très avancée comme altération (grandeur nature)

FIG. 21. - Grosse tige fendue, montrant la région de la moelle m fortement altérée et tranchant par son noircissement sur le bois a. L'altération se communiquant dans le bois au niveau fortement altéré d'une plaie de taille évoluée en chancre (réduction d'1/5)

FIG. 22. - Tige âgée fendue et montrant en son centre la moelle persistante et agrandie et l'altération se communiquant dans le bois au niveau fortement altéré d'une plaie de taille (réduction d'1/5)

FIG. 23. - Vieille souche, à un état très avancé d'altération, montrant en A, dans l'intérieur de la tige, l'altération profonde m, d'une plaie de taille, p; en B, surface correspondant à A, la plaie de taille p, fortement altérée au centre, ainsi que sur le pourtour, formant chancre (réduction d'1/4)

FIG. 24. - Deux forts chancres (a et b) vus à l'extérieur d'une tige fortement altérée sur un cordon principal de plusieurs années (Bulgarie) (réduction d'1/5)

FIG. 25. - Jeune souche de deux ans: en A et a, plaies de taille; en b, le tiers de la tige altéré et desséché; en B, moelle fortement envahie; cas assez fréquent dans les pépinières (grandeur nature)

FIG. 26. - Une même tige, vue en son centre et en surface dans les mêmes régions: M, moelle noircie; c, c, plaies de taille (grandeur nature)

FIG. 27. - Vieille souche de Cournonterral de 35 ans, présentant, nettement séparés, l'Esca E et le Court-noué N sur la même souche; plaies de taille en A (réduction d'1/4)

FIG. 28. - Moelle avec mycélium du P. medullae (grossissement: 300)

FIG. 29. - Moelle a avec mycélium m (grossissement: 50)

FIG. 30. - Moelle avec mycélium; les points noirs sont probablement des spermogonies simples (grossissement: 300)

FIG. 31. - Moelle envahie par le parasite (grossissement: 1.200)

FIG. 32. - Mycélium du début des cultures, blanchâtres mêmes caractères, au début des invasions dans la moelle (grossissement: 600)

FIG. 33. - Mycélium normal, brunâtre ou noirâtre du P. medullae (grossissement: 600)

FIG. 34. - Moelle (M) contre bois (B) avec une spermogonie noire (grossissement: 800)

FIG. 35. - Vaisseau scalariforme avec mycélium du P. medullae; les ornements ont été supprimés sur une partie du vaisseau pour montrer le mycélium intérieur et le début de son altération pour former probablement un conceptacle unique. Coupe d'un bois sec au moment de la formation de ce conceptacle (grossissement: 1.000)

FIG. 36. - Aspect général du mycélium dans des cultures artificielles du P. medullae (grossissement: 150)

FIG. 37. - Cordons mycéliens du P. medullae (grossissement: 800)

FIG. 38. - Oïdies du P. medullae. A, oïdie se désarticulant; B, deux oïdies sphéro-cylindriques; C, cinq oïdies sphéro-cylindriques superposées; a, b, c, mycélium (grossissement: 700)

FIG. 39. - Divers états de grosseur du mycélium. A et B formes oïdies; C, macrothalle; D, microthalle (grossissement: 700)

FIG. 40. - Oïdies terminales, très granuleuses du P. medullae; en a, six oïdies; en b, quatre oïdies (grossissement: 700)

FIG. 41. - Coupe transversale dans une tige au point de liaison de la moelle altérée a persistant contre le bois; m, mycélium dans la moelle; r, rayon médullaire altéré; v, vaisseau; l, fibre ligneuse (grossissement: 350)

FIG. 42. - Coupe transversale d'une tige déjà avancée comme altération; toutes les cellules ligneuses ainsi que les fibres ont leur contenu fortement noirci; r, rayon médullaire avec grains d'amidon nettement visibles, mais brunis, f, cellule ligneuse (grossissement: 450)

FIG. 43. - Coupe transversale dans une tige de vigne atteinte de mal nero envoyée par Baccarini en 1884; f b, paquet de fibres libériennes, l m, liber mou détruit (grossissement: 200)

FIG. 44. - Coupe transversale d'une tige envahie depuis longtemps par le mycélium du P. medullae dont les filaments, en partie représentés, sont très nombreux dans les vaisseaux; les deux vaisseaux du haut avec petits nodules noirs, isolés, de spermogonies (grossissement: 850)

FIG. 45. - Coupe transversale d'une tige envahie par le mycélium, v, m, du medullae dans les vaisseaux et formation de gomme dans les cellules du rayon médullaire r, r; quatre vaisseaux renferment des nodules noirs spermogoniques (grossissement: 700)

FIG. 46. - Partie de la fig. 45 montrant la gomme d'un jaune doré plus ou moins foncé dans les cellules des rayons médullaires (grossissement: 1.000)

FIG. 47, 48 et 49. - Nombreuses spermogonies, obtenues en cultures artificielles sur sarments; fig. 47, A, pustules, grandeur nature; fig. 49, B, pustules grossies six fois; fig. 48, C, pustules grossies trois fois et recouvertes d'un lacis mycélien blanc brunâtre, dès les premières phases de leur formation

FIG. 50 et 51. - Nombreuses pustules de spermogonies à l'état naturel sur tiges mortes; en 50, A, grandeur naturelle; en 51, B, grossies dix fois

FIG. 52. - Membrane commune des divers conceptacles; vue, pour les spermogonies, sur plusieurs couches (grossissement: 100)

FIG. 53. - Membrane commune du conceptacle, vue, sur une seule couche pour les périthèces (grossissement: 300)

FIG. 54. - Un bloc de spermogonies de culture (grossissement: 150)

FIG. 55. - Un autre bloc de spermogonies de culture (grossissement: 150)

FIG. 56. - Coupe d'un bloc ou d'une pustule de spermogonies enfoncées dans une membrane commune (grossissement: 550)

FIG. 57. - Coupe d'un nodule avec nombreuses spermogonies noyées dans la membrane commune. Vers le bas, en a, a, conidies jaunes sur la membrane extérieure (grossissement: 550)

FIG. 58. - Bloc de spermogonies dans la moelle très altérée par le mycélium m; en B, une spermogonie isolée (grossissement: 150)

FIG. 59. - Pustules cylindriques à nombreuses spermogonies avec nombreuses spermaties a, sorties du nodule (grossissement: 150)

FIG. 60. - Pustule réniforme à nombreuses spermogonies, obtenue en culture artificielle sur la surface d'un sarment. Nombreuses spermaties sorties du conceptacle, après leur mise dans l'eau (grossissement: 150)

FIG. 61. - Groupe cylindrique de spermogonies plongées dans une masse de spermaties qui en proviennent (grossissement: 150)

FIG. 62. - Pustules des spermogonies obtenues en cultures artificielles sur sarments de vigne (grossissement: 200)

FIG. 63. - Spermogonies, p, agglomérées, formant un bloc de neuf individualités, portées sur un pied b; s, spermaties observées à l'état naturel sur tige (grossissement: 200)

FIG. 64. - Une spermogonie isolée, avec nombreuses spermaties (grossissement: 250)

FIG. 65. - Vue partielle de l'intérieur d'une spermogonie montrant à gauche les cellules polyédriques de la membrane, surmontées d'un tissu pseudoparenchymateux blanchâtre, d'où partent d'innombrables stérigmates donnant naissance à de nombreuses spermaties rayonnant vers le centre du conceptacle (grossissement: 450)

FIG. 66. - Ensemble des spermaties, sorties en s'irradiant, par la fissure d'un conceptacle (grossissement: 450)

FIG. 67 et 68. - Spermaties (grossissement en 67, B 1.000 et en 68, C 1.300)

FIG. 69 et 70. - Nodules noirs, incrustés dans le bois d'une tige morte du Court-noué; les pustules disposées sur lignes parallèles, suivant les rayons médullaires (de grandeur naturelle en 69, A et grossies cinq fois en 70, B)

FIG. 71. - Pycnides agglomérées dans la membrane commune, pleines de stylospores; en a, conidies doubles et brunes (grossissement: 300)

FIG. 72. - Coupe partielle d'une pycnide, montrant la membrane commune et son intérieur, avec stérigmates tapissant tout cet intérieur et rayonnant vers le centre. Nombreuses stylospores (grossissement: 350)

FIG. 73. - Stylospores de pycnides (grossissement: 1.000)

FIG. 74. - Conidies (?) doubles et brunes, provenant de la surface extérieure de la membrane d'une pycnide de la fig. 71, a (grossissement: 500)

FIG. 75. - Un sclérote plongé dans le liber mou, au milieu des paquets de fibres libériennes (grossissement: 200)

FIG. 76. - Un sclérote, s, entre les paquets de fibres libériennes fl; lm, liber mou semblable au cas du mal nero de la fig. 43; r, r, rayons médullaires (grossissement: 200)

FIG. 77. - Nodule à six périthèces englobés dans la membrane commune (grossissement: 100)

FIG. 78. - Un périthèce du P. medullae avec asques rayonnant dans tout l'intérieur du périthèce vers le centre (grossissement: 300)

FIG. 79. - Asques du périthèce du medullae (grossissement: 600)

FIG. 80. - Ascospores du medullae (grossissement: 1.000)

INTRODUCTION

I. - HISTORIQUE ET GEOGRAPHIE

Historique

Géographie

II. - LES LESIONS DU COURT-NOUE

A. Symptômes

a) Rameaux

b) Feuilles

c) Fleurs et fruits

d) Racines

B. Lésions

a) Moelle et bois

b) Court-noué et pépinières

c) Influence du sol

d) Influence du cépage

e) Influence du climat

III. - LE PARASITE, SA BIOLOGIE

Parasitisme et saprophytisme

Milieux de culture

Races de culture

Résidus, (toxines (?)) de culture

Mycélium

Oïdies

Anatomie pathologique

Spermogonies

Pycnides

Formes conidiennes

Sclérotes

Périthèces

IV. - AFFINITES

V. - TRAITEMENTS

VI. - ENQUETE

VII. - TABLE DES FIGURES

VIII. - BIBLIOGRAPHIE

Recherches sur les maladies de la vigne. - Le Court-Noué, par P. VIALA, membre de l'Institut et P. MARSAIS, ingénieur agronome

Introduction générale, par E. de FELCOURT

L'Afrique du Nord, par E. PHILIPPAR

L'Afrique occidentale et l'Afrique équatoriale française, par M. LABOURET

Madagascar, par G. GRANDIDIER

L'Indochine, par H. GOURDON

Conclusion, par P. DEVINAT

L'agriculture française et l'école publique, par P. DUCLAUX, ingénieur agronome, agriculteur

Le dosage de l'amidon dans les issues de la meunerie, par P. NOTTIN, professeur à l'Institut National Agronomique et E. DARTOIS, professeur à l'Ecole Nationale des Industries agricoles

Les engrais verts dans la riziculture tonkinoise, par R. DUMONT, ingénieur agronome

Etude de quelques facteurs de la prospérité agricole en Californie, par Thérèse FREMONT, ingénieur agronome (Rapport de mission)

La Société Entomologique de France, par J. MAGNIN, archiviste-bibliothécaire

La Société Mycologique de France, par E. MONCHOT bibliothécaire-archiviste